淋巴管内皮细胞(lymphatic endothelial cells, LEC)是构成
淋巴管壁的主要结构,参与维持体液平衡、调节淋巴细胞再循环和机体免疫反应等生理过程. 近年研究表明,LEC还在伤口愈合、淋巴管水肿和炎症扩散等病理过程中起重要作用,而且与肿瘤转移密切相关[1]. 但是,由于原代分离和体外培养LEC均比较困难,国内外有关此方面的报道较少,且多集中于牛、猪等大型动物和人身上,因此大大限制了人们对LEC的认识和研究. 我们应用不完全弗氏佐剂诱导小鼠腹腔淋巴管瘤形成为细胞来源,以自制鼠尾胶作为贴黏剂培养LEC,旨在建立一个简便、廉价和稳定的小鼠LEC培养体系.
1材料和方法.1.1材料雌性健康Balb/c小鼠10只(第三军医大学大坪医院动物实验中心),4~6 wk龄,体质量(19.1±1.3) g;雄性健康SD大鼠2只(第三军医大学大坪医院动物实验中心),12 wk龄,体质量(230.4±15.4) g. 含多种生长因子的EBM2培养基(英国Cambrex公司);
胎牛血清(FBS,美国HYclone公司);不完全弗式佐剂(美国Sigma公司);兔抗鼠VEGFR3抗体,兔抗鼠LYVE1抗体(美国Santa cruz公司);FITC标记的羊抗兔IgG(武汉博士德公司);3HTdR(北京原子能研究所). 乌拉坦(1 mL/100 g)ip麻醉大鼠,剪下鼠尾,750 mL/L乙醇消毒3 min. 去皮,950 mL/L乙醇固定15 min. 抽出肌腱,750 mL/L乙醇消毒30 min,三蒸水反复冲冼以去除残余乙醇. 充分剪碎,移入三角烧杯,加入5 mL/L醋酸溶液200 mL,4℃摇动过夜. 次日吸取上层液体,4000 r/min离心30 min,收集上清即为鼠尾胶. 取少量鼠尾胶加入培养瓶中(以全部覆盖瓶底为宜),5 min后吸掉鼠尾胶,室温放置过夜以备培养LEC之用;按同法包被下述实验需要的培养板和制备爬片所需的盖玻片. 按参考文献[2]将不完全弗氏佐剂与PBS按1∶1混匀,制成乳悬液. 取8只小鼠,ip 0.2 mL;15 d后加强注射1次. 2 mo后处死小鼠. 另设2只小鼠注射相同体积的无菌PBS作为对照.
1.2方法打开小鼠腹腔,取出淋巴管瘤. 将其剪碎成约0.5 mm3大小,加入I型和II型胶原酶1∶1配成的1 g/L溶液5 mL,37℃恒温摇床消化组织块30 min,800 r/min离心10 min收集细胞,残余组织块用2.5 g/L胰蛋白酶+0.2 g/L EDTA溶液37℃摇床消化15 min,离心收集细胞,将两次收集的细胞混合,80 μm尼龙网过滤,台盼蓝计数. 之后,将细胞接种到鼠尾胶包被的培养瓶中,使用含多种生长因子的EBM2完全培养基,37℃,50 mL/L CO2孵箱中培养.
1.2.1LEC的鉴定取培养2~3代的LEC 1×106个接种于鼠尾胶包被的6孔培养板中,同时分别将鼠尾胶包被的盖玻片置于其中. 24 h后取出盖玻片,40 g/L甲醛固定20 min. 30 mL/L H2O2室温封闭10 min后,再用20 mL/L山羊血清封闭20 min. 分别以兔抗鼠VEGFR3抗体或LYVE1抗体和FITC标记的羊抗兔IgG为一抗和二抗进行免疫荧光检测,以PBS代替一抗作为阴性对照.
1.2.2LEC的增殖活力测定取培养2~3代的LEC于实验前晚半量换液,实验时取1×106个,以不含FBS和生长因子的培养液洗涤3次,最后将细胞悬浮于0.5 mL完全培养液中;加3HTdR 370 kBq,放入孵箱孵育3 h,每0.5 h轻摇1次;标记结束时加FBS数滴,洗去游离同位素,加完全培养液洗浴30 min,调整细胞密度2×108/L备用. 取LEC 0.25 mL/孔(5×104/孔)接种于鼠尾胶包被的24孔板,随机分组为:①空白对照组(使用不含生长因子和FBS的EBM2培养基);②无生长因子组(使用只含FBS的EBM2培养基);③无FBS组(使用只含生长因子的EBM2培养基);④完全培养基组(使用既含生长因子又含FBS的EBM2培养基). 在孵箱中作用20 h后,低速离心5 min,轻弃上清0.1 mL;加混合酶(8 g/L胰蛋白酶与0.5 g/L DNA酶在作用前对倍稀释而成)0.1 mL,作用30 min后,收集细胞于玻璃纤维滤纸上,烘干后放入闪烁杯送检cpm,换算成Bq,代表3HTdR的掺入量,反映LEC的增殖状况. 每份设3个复孔,取其平均值计算. 另按1×104/孔接种LEC于24孔培养板,分别在1,6,12,24,48,72,96,120 h取3孔计数活细胞(4 g/L台盼蓝拒染),实验重复3 次,取其平均值,绘出生长曲线,并按公式DT=t log2/(log Nt-log No)计算其细胞倍增时间. t表示对数生长期细胞培养时间,Nt为对数生长期终末时的细胞数,No为对数生长期起始时的细胞数. 以未用鼠尾胶包被的培养孔作为对照.
1.2.3淋巴管形成试验先将鼠尾胶铺满6孔培养板底部,置浓氨水棉球片刻,1 h后即形成胶原凝胶. 每孔接种1×105个LEC,补加完全培养液适量,置于37℃,50 mL/L CO2孵箱培养. 每天使用相差倒置显微镜观察淋巴管样结构形成的情况. 以未用鼠尾胶包被的培养孔作为对照.统计学处理:计量资料以x±s表示,采用统计软件SPSS 11.0分析,组间比较用非参数秩和检验.